By fanbingbing, 31 October, 2025

总体流程:提RNA——qPCR——定量

提前设计引物

提前约仪器荧光定量PCR仪(S2022AOGT)

  1. 提RNA
  2. 将液氮研磨成粉末的 100~200 mg 植物组织收集至 2 ml无 RNA 酶的离心管(自备)中。
  3. 往离心管内加入1ml65°℃ 预热的 Buffer PPR1,用移液器吹打或涡旋30-60s,充分裂解细胞,以降低粘稠度及提高得量。
  4. 将离心管于 65°℃水浴处理 5-10 min,期间颠倒混匀 1-2 次。
  5. 将裂解物 12,000 rpm 离心5 min。
  6. 吸取 900 ul上清至一个新离心管中,再加入 450 m无水乙醇,吹打混匀。此时可能出现沉淀,但不影响 RNA 的提取。
  7. 将上述溶液转移至基因组 DNA 清除柱中,12,000rpm离心1min,弃滤液。注:请分批过柱,每次上柱体积不大于750ul。
  8. 将基因组 DNA 清除柱置于一个 2m 无 RNA 酶的离心管(自备)内,往柱内加500ul Buffer PPR2,12,000rpm 离心1min,收集滤液(注RNA 在滤液中),往滤液中加入 250 的无水乙醇,立即吹打混匀此时可能出现沉淀,但不影响 RNA 的提取。
  9. 将上述溶液加入 HiPure RNA Column 中,12,000rpm离心1min,弃滤液。
  10. 往柱内加入 700ulBuffer RWA,室温放置1min后12,000rpm 离心 30 s,弃滤液。
  11. 往柱内加入 500 ml Buffer RwB(请先检査是否已加入无水乙醇!)10.12,000rpm离心 30s,弃滤液。重复洗涤一次,弃滤液。
  12. 将 HiPure RNA Column 放回空收集管中,12,000rpm离心 1min,尽量除去漂洗液,以免柱中残存乙醇抑制下游酶促反应。
  13. 将 HiPure RNA Column 置于洁净的 1.5 ml 无 RNA 酶的离心管中,在膜中央加入 30 μ RNA Elution Buffer ,室温放置1~2 min,12,000 rpm室温离心1min,洗脱液即含RNA。

注:将 RNA Elution Buffer 加热至 65℃,可提高洗脱效率

  1. qPCR

1.基因组DNA去除

组分:

RNase-free ddH20 to 10 ul

5 x gDNA wiper Mix:2ul

Total RNA:10 pg - 1 ug

or Poly A* RNA:10 pg - 100 ng

用移液器轻轻吹打混匀。42° 2 min。

2. 配制第一链cDNA合成反应液

组分:

上一步的混合液:10 ul

4 x HiScript IV RT SuperMix:5ul

Oligo (dT)20VN:1ul

Random Primers:2ul

RNase-free ddH20:2ul

用移液器轻轻吹打混匀。

也可使用GSP(2pmol)进行逆转录。

3. 按下列条件进行第一链cDNA合成反应

37°C 15 min

85°C 5 sec

如果模板具有复杂二级结构或高GC区域,可将反应温度提高至50°C,有助于提高产量。

产物可立即用于oPCR反应,或在-20°C保存,并在半年内使用;长期存放应分装后在-70°C保存。GDNA应避免反复冻融。

  1. 定量
  2. 将浓度调至300:按照C1V1=C2V2,C1是CDNA的浓度,C2为300,V2为20,算出V1为应该加的前期反转录的量,再加20-V1的DEPC
  3. 按照以下流程加样:

M1:SYB:5ul;F1:0.2ul;R1:0.2ul;(F1R1为所做物种的引物)

M12:SYB:5ul;F2:0.2ul;R2:0.2ul;(F2R2为基因的引物)

M2:CDNA:0.4ul;DEPC:4.2ul。(M2应该横着加在对应的基因孔内)

现在1.2.3中加入M1,456中加入M12,然后横着加入M2,后离心三分钟。

  1. 放入定量仪器中,一般选择荧光定量PCR仪(S2022AOGT)
  2. 选择96...only...
  3. 最后跑出来一个表格,查看名为...Cq-Results的表格
  4. 数据合理区间:表中内参值为14-18;基因<30

【金山文档 | WPS云文档】 荧光定量PCR实验过程
https://www.kdocs.cn/l/ckymq7E4d7Qj